(12)发明专利申请
(10)申请公布号(10)申请公布号 CN 103525914 A(43)申请公布日 2014.01.22
(21)申请号 201310440028.2(22)申请日 2013.09.23
(71)申请人光明乳业股份有限公司
地址201103 上海市闵行区吴中路578号(72)发明人张红发 任婧
(74)专利代理机构上海弼兴律师事务所 31283
代理人朱水平 沈利(51)Int.Cl.
C12Q 1/68(2006.01)C12Q 1/02(2006.01)C12N 15/11(2006.01)C12R 1/25(2006.01)
权利要求书1页 说明书6页权利要求书1页 说明书6页序列表2页 附图1页序列表2页 附图1页
(54)发明名称
一种计数植物乳杆菌活菌数的方法及其引物和试剂盒(57)摘要
本发明公开了一种计数植物乳杆菌ST-III活菌数的方法及其引物和试剂盒。该方法包括步骤:(1)以平板计数法计数样品中的活菌数X;(2)分别提取步骤(1)所述平板上所长的Y个单菌落的基因组DNA,以所得的基因组DNA为模板分别进行PCR反应,所述PCR反应的反应体系中加入SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物以及检测
(3)根据步骤(2)细菌16S rRNA的通用引物对;
所得反应产物中阳性条带的存在与否统计阳性菌落数Z,即得样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W,W=X×Z÷Y。本发明的方法操作简单,特异性强,灵敏度高,能够方便快速地检测样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数。CN 103525914 ACN 103525914 A
权 利 要 求 书
1/1页
1.一种对样品中植物乳杆菌(lactobacillus plantarum)ST-III活菌进行计数的方法,其特征在于,其包括如下步骤:
(1)以平板计数法计数样品中的活菌数X;(2)分别提取步骤(1)所述平板上所长的Y个单菌落的基因组DNA,以所得的基因组DNA为模板分别进行PCR反应,所述PCR反应的反应体系中加入SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物以及检测细菌16S rRNA的通用引物对;
(3)根据步骤(2)所得反应产物中阳性条带的存在与否统计阳性菌落数Z,即得样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W,W=X×Z÷Y。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(2)所述的检测细菌16S rRNA的通用引物对为序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物对。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(2)所述PCR反应的扩增程序为:①93~96℃,4~6min;②93~96℃,20~40s;③53~58℃,20~40s;④70~74℃,20~40s;⑤70~72℃,5~10min;其中,步骤②至④的循环数为25~35;所述PCR反应的反应体系包括如下终浓度的各组分:0.2~0.4μmol/L序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.15~0.35mmol/L dNTP、0.8~1.2×PCR buffer、0.8~1.8mM的Mg2+、0.015~0.025U/μL Taq DNA聚合酶和0.5~2ng/μL模板。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(2)所述PCR反应的扩增程序为:①95℃,5min;②95℃,30s;③55℃,30s;④72℃,30s;⑤72℃,5min;其中,步骤②至④的循环数为30;所述PCR反应的反应体系包括如下终浓度的各组分:0.25μmol/L序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.2mmol/L dNTP、1×PCR buffer、1mM的Mg2+、0.02U/μL Taq DNA聚合酶和1ng/μL模板。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述阳性条带包括由SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示引物扩增出的173bp的条带和由SEQ ID NO.3、SEQ ID NO.4所示的通用引物对扩增出的362bp的条带。
6.一种检测植物乳杆菌ST-III的引物对,其特征在于,其包括序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物。
7.一种用于检测植物乳杆菌ST-III的试剂盒,其特征在于,其包括如权利要求6所述的检测植物乳杆菌ST-III的引物对。
8.如权利要求7所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒中还包括序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物对。
9.如权利要求7所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒中还包括dNTP、PCR buffer、Mg2+、Taq DNA聚合酶和dd H2O中的任一种或多种。
10.如权利要求7所述的试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒还包括基因抽提试剂。
2
CN 103525914 A
说 明 书
1/6页
一种计数植物乳杆菌活菌数的方法及其引物和试剂盒
技术领域
本发明属于微生物检测领域,具体涉及一种计数植物乳杆菌(lactobacillus
plantarum)ST-III活菌数的方法及其引物和试剂盒。
[0001]
背景技术
光明乳业股份有限公司筛选的专利菌株植物乳杆菌ST-III,具有降血脂、降胆固醇、减肥等益生功效,但是植物乳杆菌的种类很多,并不是所有植物乳杆菌都具有这些功能。而且益生菌要发挥益生功能,其活菌数必需大于106cfu/g,产品中植物乳杆菌ST-III的活菌数决定着产品的质量与功能。为此,有必要发展准确的特定菌株活菌计数技术。[0003] 到目前为止,已经有一些应用PCR检测鉴定植物乳杆菌ST-III的方法。如专利CN102453767A中公开了一种快速定量检测植物乳杆菌ST-III的方法及其试剂盒,该方法的基本操作包括:提取待检样品的总RNA,反转录成cDNA,再做荧光定量。由于菌体内的RNA分解速度较快,通常只有在菌体保持新鲜的状态下才能获得较准确的结果,因此该方法只适合于对新鲜的样品进行计数。当样品存放一段时间后,产品中的活菌数可能变化不大,但是提取的RNA却可能发生部分降解,从而影响计数的准确性。此外,该方法的检测极限仅为2.85x103cfu/mL,并在检测过程中常伴有正负1个数量级的误差,而且该方法的操作过程很繁杂,对实验者的要求很高,更由于所使用的部分试剂有毒,因此在实际应用中难以推广。又如,专利CN102533790A中公开了一种检测植物乳杆菌ST-III的PCR检测方法及其引物和试剂盒,该方法能特异性地检测植物乳杆菌ST-III,但却不能区分产品中的死菌与活菌,且在PCR反应中常出现假阴性和假阳性,所以该方法也无法对样品中的植物乳杆菌ST-III的活菌数进行准确的计数。因此,到目前为止,本领域尚缺乏系统的、能够准确定量检测植物乳杆菌ST-III活菌的计数方法。
[0002]
发明内容
[0004] 本发明所要解决的技术问题是针对目前对植物乳杆菌ST-III的定量检测方法灵敏度不够高、准确性较差且操作复杂的缺陷,而提供一种新的计数植物乳杆菌ST-III活菌数的方法及其引物和试剂盒。本发明的方法及其引物和试剂盒用于测定植物乳杆菌ST-III,其操作简单,特异性强,灵敏度高,能够方便、快速地测定样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数,为具有特定功能的植物乳杆菌ST-III的应用打下基础;同时也为研究其它功能性菌株的活菌计数方法提供了有益参考。[0005] 本发明提供的技术方案之一是:一种对样品中植物乳杆菌(lactobacillus plantarum)ST-III活菌进行计数的方法,其包括如下步骤:[0006] (1)以平板计数法计数样品中的活菌数X;
[0007] (2)分别提取步骤(1)所述平板上所长的Y个单菌落的基因组DNA,以所得的基因
组DNA为模板分别进行PCR反应,所述PCR反应的反应体系中加入SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物以及检测细菌16S rRNA的通用引物对;
3
CN 103525914 A
说 明 书
2/6页
[0008] (3)根据步骤(2)所得反应产物中阳性条带的存在与否统计阳性菌落数Z,即得样
品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W,W=X×Z÷Y。[0009] 本发明步骤(1)中,所述的平板计数法为本领域常规所述,一般是先将待测样品进行梯度稀释,将稀释后的样品涂布计数平板,直至在计数平板上长出单克隆,对单克隆菌落进行计数即可。所述的计数平板可以为本领域常规,如MRS固体平板、TPY固体平板和BBL固体平板等。较佳地,在本发明中,所述平板计数法为采用MRS固体平板培养稀释后的样品,直至在MRS固体平板上长出单克隆,对单克隆菌落进行计数,所得菌落数代表样品中的活菌数X。
[0010] 本发明步骤(2)中所述分别提取步骤(1)所述平板上所长的Y个单菌落的基因组DNA一般按常规分子生物学检测的方法进行,所述Y的数量可为任意的适合于常规实验操作进行的数目,一般在10~100之间为佳。[0011] 本发明步骤(2)中,所述的检测细菌16S rRNA的通用引物对为本领域常规所述,只要其能够扩增出细菌16S rRNA的对应片段即可,以此作为检测时的阳性对照,防止假阴性的发生。较佳地,所述的检测细菌16S rRNA的通用引物对为序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物对。[0012] 本发明步骤(2)中,所述PCR反应的扩增程序为常规,只要能扩增出目标片段即可。较佳地,所述PCR反应的扩增程序为:①90~98℃,3~10min;②90~98℃,10~120s;③45~60℃,10~120s;④65~80℃,20~120s;⑤68~75℃,2~30min;其中,步骤②至④的循环数为20~45。更佳地,所述PCR反应的扩增程序为:①93~96℃,4~6min;②93~96℃,20~40s;③53~58℃,20~40s;④70~74℃,20~40s;⑤70~72℃,5~10min;其中,步骤②至④的循环数为25~35。最佳地,所述PCR反应的扩增程序为:①95℃,5min;②95℃,30s;③55℃,30s;④72℃,30s;⑤72℃,5min;其中,步骤②至④的循环数为30。[0013] 本发明步骤(2)中,所述PCR反应的反应体系为常规,只要能扩增出目标片段即可。较佳地,所述PCR反应的反应体系包括如下终浓度的各组分:0.1~0.5μmol/L序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物和检测细菌16S rRNA的通用引物对、0.1~0.5mmol/L dNTP、0.5~1.5×PCR buffer、0.5~2mM的Mg2+、0.01~0.03U/μL Taq DNA聚合酶和0.1~10ng/μL模板。更佳地,所述PCR反应的反应体系包括如下终浓度的各组分:0.2~0.4μmol/L序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.15~0.35mmol/L dNTP、0.8~1.2×PCR buffer、0.8~1.8mM的Mg2+、0.015~0.025U/μL Taq DNA聚合酶和0.5~2ng/μL模板。最佳地,所述PCR反应的反应体系包括如下终浓度的各组分:0.25μmol/L序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.2mmol/L dNTP、1×PCR buffer、1mM的Mg2+、0.02U/μL Taq DNA聚合酶和1ng/μL模板。[0014] 本发明步骤(2)中,在分别提取步骤(1)所述平板上所长的Y个单菌落的基因组DNA,以所得的基因组DNA为模板分别进行PCR反应时,较佳地还包括同时以步骤(1)所述的计数平板的培养基成分为阴性对照的模板进行阴性对照PCR,所述阴性对照PCR的反应体系除模板为步骤(1)所述的计数平板的培养基成分之外,其余同步骤(2)所述的PCR反应,所述阴性对照PCR的反应程序同步骤(2)所述的PCR反应。
4
CN 103525914 A[0015]
说 明 书
3/6页
本发明步骤(3)中,所述阳性条带包括由SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示引物扩
增出的173bp的条带和由检测细菌16S rRNA的通用引物对扩增出的对应阳性片段;所述根据步骤(2)所得反应产物中阳性条带的存在与否统计阳性菌落数Z即指,若步骤(2)所得的反应产物中同时存在由SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示引物扩增出的173bp的条带和由检测细菌16S rRNA的通用引物对扩增出的对应阳性片段,则说明该菌落为阳性菌落,若步骤(2)所得的反应产物中不同时存在由SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示引物扩增出的173bp的条带和由检测细菌16S rRNA的通用引物对扩增出的对应阳性片段,则说明该菌落为阴性菌落。较佳地,所述阳性条带包括由SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示引物扩增出的173bp的条带和由SEQ ID NO.3、SEQ ID NO.4所示的通用引物对扩增出的362bp的条带。[0016] 本发明提供的技术方案之二是:一种检测植物乳杆菌ST-III的引物对,其包括序列如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2所示的引物。
[0017] 本发明所述的引物对与细菌16S rRNA的通用引物对一起使用进行多重PCR反应,可以更特异地检测植物乳杆菌ST-III菌株,保证结果的准确性。[0018] 本发明提供的技术方案之三是:一种用于检测植物乳杆菌ST-III的试剂盒,其包括如上所述的检测植物乳杆菌ST-III的引物对。[0019] 较佳地,所述的试剂盒中还包括检测细菌16S rRNA的通用引物对,所述引物对优选序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物对。[0020] 较佳地,所述的试剂盒中还包括dNTP、PCR buffer、Mg2+、Taq DNA聚合酶和dd H2O中的任一种或多种。[0021] 更佳地,所述的试剂盒还包括基因抽提试剂。[0022] 在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,即得本发明各较佳实例。
[0023] 本发明所用试剂和原料均市售可得。[0024] 本发明的积极进步效果在于:本发明的方法操作简单,特异性强,灵敏度高,能够方便快速地检测样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数,达到平板计数的准确度,为具有特定功能的植物乳杆菌ST-III的应用打下基础;同时也为其它功能性菌株的计数方法提供了有益参考。附图说明
图1为PCR引物特异性验证的结果图,其中,M为DL2,000DNA Marker;0为阴性对
照;1为L.plantarum ST-III;2为L.plantarum ATCC8014;3为L.plantarum ACCC11095;4为L.plantarum GIM6003;5为L.plantarum LP-Onlly;6为L.plantarum WCFS1;7为Bifidobacterium animalis Bb-12;8为Bifidobacterium bifidum;9为Lactobacillus helveticus;10为Streptococcus thermophilus ST-21;11为Lactobacillusdelbrueckii subsp.Bulgaricus;12为Lactobacillus.acidophilus NCFM;13为Bacillus subtilis CMCC63501;14为Escherichia coli ATCC25922。[0026] 图2为实施例2多重PCR计数的结果图,其中,M为DL2,000DNA Marker;0为阴性对照;1-20分别代表选取的单个菌落1-20。
[0025]
5
CN 103525914 A
说 明 书
4/6页
具体实施方式
[0027] 下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。
[0028] 下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。
[0029] 下述实施例中所用引物和探针由英潍捷基(上海)贸易有限公司合成。[0030] 实施例1多重PCR引物特异性验证
[0031] 选择与植物乳杆菌ST-III同种不同株以及不同种的细菌,抽提菌体DNA为模板进行多重PCR反应,检验多重PCR引物的特异性。所用菌株为:植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum ST-III,光明乳业技术中心),其它同种不同株植物乳杆菌(L.plantarum ATCC8014、L.plantarum ACCC11095、L.plantarum GIM6003、L.plantarum LP-Onlly、L.plantarum WCFS1,均购自上海北诺生物科技有限公司);不同种的细菌为:动物双歧杆菌(Bifidobacterium animalis Bb-12,购自科汉森有限公司)、两岐双岐杆菌(Bifidobacterium bifidum,购自丹尼斯克有限公司)、瑞士乳杆菌(Lactobacillus helveticus,购自丹尼斯克有限公司)、嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus ST-21,购自丹尼斯克有限公司)、德氏乳杆菌保加利亚亚种(Lactobacillusdelbrueckii subsp.Bulgaricus,购自丹尼斯克有限公司)、嗜酸乳杆菌(Lactobacillus.acidophilus NCFM,购自科汉森有限公司)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis CMCC63501,购自上海北诺生物科技有限公司)、大肠杆菌(Escherichia coli ATCC25922,购自上海北诺生物科技有限公司)。[0032] 在PCR反应体系中加入由序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示引物组成的通用引物对进行PCR,作为阳性对照以防止假阴性的发生。所述多重PCR反应的反应体系的总体积为30μL,其中包括0.25μmol/L序列分别如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.2mmol/L dNTP、1×PCR buffer、1mM的Mg2+、0.02U/μL Taq DNA聚合酶和1ng/μL模板DNA,其余为去离子水。所述多重PCR反应的扩增程序为:95℃预热5min,30个循环(95℃,30s;55℃,30s;72℃,30s),72℃延伸5min。PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。结果如图1所示。[0033] 从图1可以看出,所有细菌的阳性标记PCR都有条带(362bp),说明PCR试剂有效。只有植物乳杆菌ST-III能特异性扩增出相应的菌株特异性条带(173bp),而其它细菌,特别是与植物乳杆菌ST-III相近的同种不同株的植物乳杆菌都没有扩增出相应的条带。实验结果说明本发明多重PCR的特异性强,可以适合于对混合发酵产品中植物乳杆菌ST-III的检测。
实施例2多重PCR对植物乳杆菌ST-III计数
[0035] 光明乳业有限公司生产的畅优酸奶含有功能性益生菌植物乳杆菌ST-III,另外还含有嗜热链球菌、保加利亚乳杆菌和动物双歧杆菌等。称取1g样品,做系列梯度稀释,选择10-5、10-6两个梯度,分别涂布MRS固体平板,厌氧箱内培养2-3天。选择菌落数在30-300间的平板进行计数,将稀释倍数与计数所得的平均菌落数相乘即得样品中植物乳杆菌ST-III的疑似菌落总数(该疑似菌落总数包含植物乳杆菌ST-III,同时还可能包含部分杂菌)。随
[0034]
6
CN 103525914 A
说 明 书
5/6页
机挑选一定数量的(本实施例选取了20个单菌落)植物乳杆菌ST-III疑似单菌落,做PCR鉴定。用灭菌枪头吸取菌体,吹吸数次将益生菌菌体悬浮于抽提试剂中,抽提试剂由终浓度为1×PCR缓冲液和0.02mol/L NaOH组成。100℃水浴5分钟,混合物直接作为PCR模板。同时在平板空白处吸取培养基用抽提试剂提取作为阴性空白对照。根据植物乳杆菌ST-III PCR鉴定为阳性所占的比例,以及平板计数的疑似菌落总数,计算出产品中植物乳杆菌ST-III的数量。
[0036] 结果如图2所示,所选取的20个菌落(Y)都有细菌阳性标志PCR条带,其中15个(Z)为植物乳杆菌ST-III,Z与Y的比值为15/20,平板计数结果(X)为2.1×108cfu/g。因此所检测的样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W为1.6×108cfu/g(由2.1×108cfu/g×15÷20计算得出)。阴性对照的2对PCR引物都没有条带,说明PCR没有污染,计数准确。
[0037] 实施例3植物乳杆菌ST-III保藏计数
[0038] 将光明乳业有限公司生产的畅优酸奶在4℃保藏一个月,计数植物乳杆菌ST-III活菌数。具体操作参照实施例2。所述多重PCR反应的反应体系的总体积为30μL,其中包括0.2μmol/L序列分别如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.15mmol/L dNTP、0.8×PCR buffer、0.8mM的Mg2+、0.015U/μL Taq DNA聚合酶和0.5ng/μL模板DNA,其余为去离子水。所述多重PCR反应的扩增程序为:93℃预热4min,25个循环(93℃,20s;53℃,20s;70℃,20s),72℃延伸5min。[0039] 结果显示,所选取的20个菌落(Y)都有细菌阳性标志PCR条带,其中10个(Z)为植物乳杆菌ST-III,Z与Y的比值为10/20平板计数结果(X)为1.6×108cfu/g。因此,所检测的样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W为8×107cfu/g(由1.6×108cfu/g×10÷20计算得出),大于1×106cfu/g,说明产品在保质期内合格。阴性对照没有条带,说明PCR没有污染,计数准确。同时,本实施例还抽提了待测样品的菌体RNA,发现在实验过程中菌体RNA完全降解,无法按照专利CN102453767A介绍的方法进行检测。[0040] 实施例4光明畅优植物乳酸菌饮品ST-III计数[0041] 称取1g光明畅优植物乳酸菌饮品样品,具体操作参照实施例2。所述多重PCR反应的反应体系的总体积为30μL,其中包括0.4μmol/L序列分别如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物、0.35mmol/L dNTP、1.2×PCR buffer、1.8mM的Mg2+、0.025U/μL Taq DNA聚合酶和2ng/μL模板DNA,其余为去离子水。所述多重PCR反应的扩增程序为:96℃预热6min,35个循环(96℃,40s;58℃,40s;74℃,40s),70℃延伸10min。
[0042] 结果显示,所选取的20个菌落(Y)都有细菌阳性标志PCR条带,其中3个(Z)为植物乳杆菌ST-III,Z与Y的比值为3/20,平板计数结果(X)为1.7×108cfu/g。因此,所检测的样品中植物乳杆菌ST-III活菌数W为2.6×107cfu/g(由1.7×108cfu/g×3÷20计算得出)。阴性对照没有条带,说明PCR没有污染,计数准确。[0043] 实施例5光明畅优植物乳酸菌饮品室温保藏计数[0044] 将光明畅优植物乳酸菌饮品在25℃保藏2周,计数产品中植物乳杆菌ST-III的活菌数。具体操作参照实施例2。所述多重PCR反应的体系为:序列分别如SEQ ID NO.1、SEQ ID NO.2、SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示的引物(5μmol/L)1μL,2.5m M dNTP2μL,
7
CN 103525914 A
说 明 书
6/6页
10×PCR Buffer3μL,模板DNA1μL,Taq DNA聚合酶0.9U,加去离子水至总体积为30μL。所述多重PCR反应的扩增程序为:94℃预热4min,30个循环(94℃,20s;54℃,20s;72℃,20s),72℃延伸5min。[0045] 结果显示,所选取的20个菌落(Y)都有细菌阳性标志PCR条带,其中6个(Z)为植物乳杆菌ST-III,Z与Y的比值为6/20,平板计数结果(X)为1.6×102cfu/g。因此,所检测的样品中植物乳杆菌ST-III的活菌数W为4.8×101cfu/g(由1.6×102cfu/g×6÷20计算得出),远小于1×106cfu/g。阴性对照没有条带,说明PCR没有污染,计数准确。说明光明畅优植物乳酸菌饮品不适宜室温存放,易造成菌体失活。而专利CN102453767A中介绍的方法的检测极限仅为2.85x103cfu/mL,无法对活菌数低的样品进行检测。
8
CN 103525914 A[0001]
[0002]
序 列 表
9
1/2页
CN 103525914 A
序 列 表
10
2/2页
CN 103525914 A
说 明 书 附 图
1/1页
图1
图2
11
因篇幅问题不能全部显示,请点此查看更多更全内容